
ERGEBNISSE KAPITEL 3
Tab. 3.3: Gen-Cluster für potentielle Formiat-Dehydrogenasen auf Chr.2.
Nr CDS Annotation
1 H16_B1702 oxalate:formate antiporter
2 H16_B1701 tungsten-containing formate dehydrogenase beta subunit
3 H16_B1700 tungsten-containing formate dehydrogenase alpha subunit
1 H16_B1452 nitrate-inducible formate dehydrogenase alpha subunit
2 H16_B1453 nitrate-inducible formate dehydrogenase beta subunit
3 H16_B1454 nitrate-inducible formate dehydrogenase gamma subunit
4 H16_B1455 formate dehydrogenase accessory protein
1 H16_B1472 transcriptional regulator
2 H16_B1471 formate dehydrogenase alpha subunit
3 H16_B1470 formate dehydrogenase beta subunit
4 H16_B1702 oxalate:formate antiporter
Interessanterweise wurden sowohl auf Chr.1 als auch auf Chr.2 verschiedene Clu-
ster identifiziert, die unter anderem Ähnlichkeiten zu dem in
Starkeya novella (vormals
Thiobacillus novellus) charakterisierten soxBCD-Operon (Kappler et al., 2001) aufwei-
sen. Die Fähigkeit zur Oxidation von Schwefel, die wahrscheinlich über das
sox-Operon
vermittelt wird, ermöglicht
Starkeya novella ein fakultativ chemolithotrophes Wach-
stum (Starkey, 1935).
R. eutropha ist dagegen nicht in der Lage, Schwefel zu oxidieren
(C.G. Friedrich, persönliche Mitteilung). Ob die im Genom von
R. eutropha
identifizierten
sox-Gene für funktionelle Proteine kodieren oder welche Enzyme für
eine vollständige Schwefeloxidation fehlen, bedarf noch weiterer Klärung.
3.I.4.2 Erweiterung des Substratspektrums
3.I.4.2.1 Alternative Kohlenstoffquellen
3.I.4.2.1.1 Abbau von Kohlenhydraten
Bereits während der ersten Charakterisierung von R. eutropha H16 war gezeigt worden,
daß dieser Organismus von allen getesteten Zuckersubstraten nur auf Fructose wächst
(Bartha, 1962; Wilde, 1962). Kein Wachstum hingegen wurde auf Saccharose, Glucose,
Galactose, Mannose, Arabinose, Ribose, Sorbose, Xylose und Xylulose beobachtet.
Von den getesteten Säuren, die sich aus Zuckern ableiten, wurde eine Umsetzung nur
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