
4 Material und Methoden
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gebracht. Davon wurden jeweils 3 µl in vier verschiedene Reaktionsgefäße
aliquotiert, zu denen je 1 µl der Sequenzierreagenz des entsprechenden Dideoxy-
Nukleotids gegeben wurde. Anschließend wurde der Reaktionsansatz mit 20 µl
Mineralöl überschichtet und die Amplifikation in beschriebener Weise einer PCR
durchgeführt. Danach erfolgte das Stoppen der Reaktion mit 3 µl des im Kit
enthaltenen formamidhaltigen Auftragspuffers. Die Abbruchprodukte der Reaktion
wurden mittels eines Sequenzierer (Li-COR II 4000S, MWG Biotech AG Ebersberg)
in einem denaturierenden 6 % Acrylamidgel (SequaGel XR, Biozym Diagnostik,
Hess. Oldendorf) aufgetrennt. Die während des Laufs anfallenden Daten wurden
gesammelt und anschließend ausgewertet.
4.9.11 Primer Extension
Der Transkriptionsstartpunkt von Genen wurde nach Ausubel et al. (1996) mit
folgenden Modifikationen bestimmt: Es wurden 20 µg Gesamt-RNA aus M. voltae in
exponentieller Wachstumsphase, 3 pmol eines mit IRD-800 markierten
Oligonukleotids, (MWG Biotech AG Ebersberg), 2 µl 10 mM dNTPs (je 2,5 mM) in
12 µl H
2
O für 10 min bei 70°C inkubiert und anschließend auf 42°C langsam
a/jointfilesconvert/481994/bgekühlt. Dem Ansatz wurden 10 mM DTT, 200 U SuperScript
TM
II RNase H
-
Reverse Transcriptase (Invitrogen
TM
life technologies, Karlsruhe) nach Angaben des
Herstellers zugegeben. RNaseOut
TM
(Invitrogen
TM
life technologies, Karlsruhe) wurde
durch 40 U RNase Block Ribonuclease Inhibitor (Stratagene, Amsterdam,
Niederlande) ersetzt. Das Gemisch wurde in einem Endvolumen von 20 µl
Reaktionspuffer für 30 min bei 42°C inkubiert und nach Zugabe von 180 µl 10 mM
Tris/HCl, pH 8,0, 1mM EDTA mit Phenol/Chloroform extrahiert. Die wässrige Phase
wurde zu einer Endkonzentration von 0,1 mg/ml mit Glycogen und von 0,3 M mit Na-
Acetat, pH 5,6 versetzt. Nach dem Mischen des Ansatzes wurden 0,8 V Isopropanol
hinzugefügt und die gefällten Nukleinsäuren für 30 min bei 13 000 x g und 4°C
sedimentiert. Der Niederschlag wurde mit 80 % Ethanol gewaschen, bei
Raumtemperatur getrocknet und in 3 µl H
2
O und 2 µl formamidhaltigem
Auftragspuffer (DYEnamic Direct Cycle Sequencing Kit, Amersham Biosciences,
Freiburg) aufgenommen. Vor der Analyse wurde die Probe für 5 min bei 70°C
inkubiert und anschließend neben einer Sequenzreaktion, die mit dem gleichen
Oligonukleotid durchgeführt worden war, in einem denaturierenden 6 % Acrylamidgel
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