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4 Material und Methoden

E. coli XL1 Top 10

mcrA

∆

(mrr-hsdRMS-mcrBC)

ф80lacZ

∆

M15

∆

lacX74 deoR recA1

araD139

∆

(ara-leu)7697 galU galK rpsL

(St

) endA1 nupG

Invitrogen, Karlsruhe

E. coli

XL1-Blue MRF´

∆(mcrA)183 ∆(mcrBC-hsdSMR-mrr)173

endA1 supE44 thi-1 recA1 gyrA96 relA1 lac

[F`proAB lacl

Z∆M15 Tn10 (Tet

)]

Stratagene, Amsterdam,

Niederlande

E. coli

SOLR™

e14(McrA) ∆(mcrCB-hsdSMR-mrr)171

sbcC recB recJ uvrC umuC::Tn5 (Kan

)lac

gyrA96 relA1 thi-1 endA1 λ

[F´proAB

lacl

Z∆M15] su

Stratagene, Amsterdam,

Niederlande

M. voltae V1 uidA

his

Pur

(Pfeiffer et al., 1998)

M. voltae

∆

sdmA

uidA

his

Pur

∆

sdmA

diese Arbeit

M. voltae

∆

sdmB

uidA

his

Pur

∆

sdmA

diese Arbeit

M. voltae

∆

sdmC

uidA

his

Pur

∆

sdmA

diese Arbeit

M. voltae

∆

sdmBC

uidA

his

Pur

∆

sdmA

diese Arbeit

4.5 Oligonukleotide

Die in der vorliegender Arbeit verwendeten Oligonukleotide wurden von den Firmen

Thermo Electron, Ulm, und MWG Biotech, Ebersberg, bezogen. Sie sind in Tab. 2

angegeben.

Tab. 2: Oligonukleotide zu den Untersuchungen der Gene sdmA, sdmB

und sdm C

Bezeichnung Sequenz Verwendungszweck

pep2ufw (sdm) GGWTAYAAYGCWTTYGA

Identifikation von

sdmA

pep1urv (sdm) GCGTAWCCGTCWGC

Identifikation von

1 2 ... 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 ... 100 101

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